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慢性肾衰模型操作步骤
慢性肾衰模型的建立通常涉及多种方法,其中两种常见的方法包括物理学方法和生物学方法。以下是两种方法的操作步骤:
物理学方法:肾大部分切除法
准备动物:选择体重约250g的成年大鼠,按30mg/kg体重的剂量注射戊babi妥钠进行麻醉。
手术操作:
麻醉后,将大鼠仰卧固定,腹部备皮、消毒。
沿左腹旁切口切开皮肤,暴露左侧肾脏,切开上、下极的包膜,上下极分别切除肾脏的1/3。
使用明胶海绵压迫创面止血,生理盐水冲洗后,常规手术缝合肌层和皮肤,关闭腹腔。
后续处理:
一周后,以同样方法麻醉大鼠,沿右腹旁切口切开皮肤,暴露右侧肾脏,结扎肾蒂后切除右肾。
造模前后将模型大鼠置于代谢笼收集24小时尿液,测定24小时蛋白定量。
按实验预定时间取静脉血样测定血肌酐(SCr)、血尿素氮(BUN)。
麻醉后放血法处死动物,取动物残肾组织标本,进行后续的组织学观察。
生物学方法:带阳电荷牛血清白蛋白(C-BSA)法
制备C-BSA:
将无水乙二胺(EDA)与双蒸水、HCl混合,调整pH值,并加入牛血清白蛋白(BSA)和无碘EDC(碳化二亚胺)搅拌,制备成C-BSA。
免疫处理:
选择体重约2.5kg的新西兰兔,经耳缘静脉注射预先制备的C-BSA和大肠杆菌内毒素进行预免疫。
一周后,每日从耳缘静脉注射C-BSA,持续5周,进行致病免疫。
再隔日注射C-BSA,持续5周,整个造模时间为10周。
后续处理:
同时取肾组织作电镜标本,在透射电镜下观察肾组织的变化。
以上步骤为慢性肾衰模型建立的常见方法,但请注意,具体实验步骤可能因实验条件和要求而略有不同。在实验过程中,请遵循实验室的规范和安全操作程序。
- 上一个:常见的2种脑缺血模型的操作步骤
- 下一个:大鼠、小鼠、地鼠的日龄判断
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