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大鼠脑损伤模型的建立与评估方法
(1) 模型复制方法
选取健康雄性大鼠,体重介于230至260克,采用改良的Feeney自由落体硬膜外撞击法构建脑损伤模型。此方法使用一套由底板、固定支架、垂直导杆、下落装置及聚乙烯撞击圆锥组成的设备。撞击圆锥头部直径4毫米、高2.5毫米。动物通过腹腔注射水合氯醛(350-400mg/kg)或戊巴比妥钠(50-60mg/kg)进行麻醉。麻醉后,头部固定,剃除头顶毛发并消毒,沿中线切开头皮,暴露骨膜。使用牙科钻在中线旁2毫米、靠近冠状缝处开5毫米直径的孔,保持硬膜完整。随后,通过不同重量的砝码(20克、40克)在不同高度(10厘米、25厘米、30厘米)自由落体撞击硬膜上的圆锥,模拟轻、中、重度脑损伤,冲击力分别为200g·cm、600g·cm和1000g·cm。操作完成后,封闭骨窗,缝合伤口,恢复饲养。
(2) 检测指标
脑含水量测定:动物麻醉后迅速取出大脑,清除表面血迹,取左侧顶叶皮质样本100毫克,通过湿重与干重(110℃干燥24小时)的差异,依据Elliot公式计算含水量百分比。
血脑屏障渗透性评估:损伤前1小时注入2%伊文斯蓝(3ml/kg),取脑组织前灌注生理盐水清理血液中染料。样本称重后加入二甲基甲酰胺处理,检测伊文斯蓝吸光度,反映屏障受损程度。
病理学观察:损伤24小时后,灌注固定液并取脑组织,进行HE染色及尼氏小体染色的光镜观察,或使用透射电镜观察超微结构变化。
(3) 模型特点
脑含水量:轻度损伤后30分钟开始上升,24小时达到约80%的峰值,72小时后降低,168小时恢复正常。中度与重度损伤的含水量增加更快,持续时间更长,重度损伤甚至在168小时后仍未完全恢复。
血脑屏障通透性:损伤后迅速增加,重度损伤尤为显著,轻中度在6小时达到高峰,重度在3小时,随后逐渐下降。
组织学变化:轻度至重度损伤均显示细胞水肿、尼氏小体染色变浅、微血管改变,重度损伤还伴随线粒体肿胀、内质网扩张、核形态变化等显著超微结构损伤。
(4) 比较医学价值
此模型模仿了临床加速性脑损伤,损伤局部化,适于研究脑挫裂伤。其优点包括损伤机制明确、操作简便、可控性强、损伤一致性好、模型脑水肿特性与临床相似,以及使用大鼠便于经济高效的定量和长期研究。此外,此模型亦适用于小鼠和新西兰白兔,通过调整撞击参数和操作细节,可适应不同物种的需求。
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